一、技术概述与研究意义

细胞间通讯是维持细胞动力学与机体稳态的核心过程。除直接接触外，可溶性蛋白因子的分泌是细胞，尤其是免疫细胞，进行信息交流的关键方式。因此，对蛋白质分泌行为进行精确测定，对于解析“免疫细胞社会学”至关重要。

传统方法（如酶联免疫吸附实验，ELISA）仅能检测细胞群体分泌蛋白的总浓度，无法揭示分泌该蛋白的细胞频率及其活化状态。酶联免疫斑点技术应运而生，它能够在单细胞水平上对蛋白质分泌行为进行可视化、定量分析，直接反映分泌特定蛋白的功能性细胞频率，为评估细胞免疫应答提供了独特视角。

二、技术发展历程

ELISPOT技术的原理雏形出现于20世纪80年代。1983年，Sedgwick与Czerkinsky两个研究小组分别报道了利用固相酶联免疫技术检测抗体分泌细胞的方法，后者首次明确提出了“ELISPOT”的概念。

技术发展初期，由于B细胞分泌的免疫球蛋白量较大，易于检测，应用较为顺利。然而，在T细胞研究领域，由于其所分泌的细胞因子量少、检测抗体灵敏度不足及显色膜材质限制等因素，该技术一度面临斑点不清、灵敏度低及重复性差等挑战。直至1996年，Lehmann团队引入聚偏二氟乙烯膜作为固相载体，其卓越的蛋白吸附能力与显色分辨率显著提升了检测灵敏度，推动了ELISPOT技术在T细胞免疫研究中的广泛应用。

三、ELISPOT技术的基本原理与流程

ELISPOT技术基于高度特异性的抗原-抗体反应，其标准化操作流程主要包含以下几个核心步骤：

1. 包被抗体： 将具有高亲和力的捕获抗体预先固定于多孔板底部，形成免疫吸附层。

2. 细胞孵育与刺激： 将待测细胞（如淋巴细胞）接种至板中，并在特定刺激物（如抗原、多肽或促有丝分裂原）存在下进行培养，激活目标细胞分泌细胞因子或其他蛋白。

3. 靶蛋白捕获： 细胞分泌的靶蛋白在扩散至培养基之前，被其周围的捕获抗体立即捕获，在细胞原位形成免疫复合物。

4. 检测与显色： 移除细胞后，加入生物素标记的检测抗体，继而加入酶标记的链霉亲和素。最后加入底物，酶催化底物在抗体捕获位点产生不溶性的有色沉淀，形成斑点。

5. 结果分析： 使用自动斑点分析系统或显微镜对斑点进行计数，每一个斑点代表一个曾分泌靶蛋白的活性细胞。

四、ELISPOT与其他细胞因子检测技术的比较

为全面评估细胞免疫反应，多种技术平台可供选择。下表以T细胞免疫评估为例，对比了不同检测平台的特点：

表1. T细胞免疫评估常用检测平台比较

与其他技术相比，ELISPOT的核心优势在于其极高的灵敏度（可达百万分之一）以及能够检测细胞实际分泌的功能性行为，而非细胞内储存。与ICS相比，ELISPOT无需使用分泌抑制剂，能够持续捕获整个孵育期内细胞分泌的蛋白，更适于高通量筛选。

五、技术进展与应用前景

为满足日益复杂的研究需求，ELISPOT技术本身也在不断发展。双色显色ELISPOT与多色荧光ELISPOT技术的成功开发，实现了在同一实验中同时检测两种或多种蛋白的分泌，极大地扩展了其应用范围。

目前，ELISPOT技术已被广泛应用于多个领域，包括但不限于：

• 疫苗免疫学评价（如肿瘤疫苗、病毒疫苗）

• 感染性疾病的免疫应答监测（如结核、HIV）

• 自身免疫性疾病的致病机理研究

• 移植免疫中的排斥反应评估

• 肿瘤免疫治疗的疗效预测与监测

• 过敏原的特异性反应研究

综上所述，ELISPOT作为一种高度灵敏、功能性的单细胞检测技术，为深入理解机体免疫状态提供了不可替代的研究工具，具有广阔的临床应用与科研前景。

六、酶联免疫斑点(Elispot)相关技术服务哪里有？

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