一、主流多因子检测技术对比(Luminex/MSD/ 流式 CBA)
(一)Luminex 液相芯片多因子检测
技术原理:
(1)荧光编码微球:直径 5.6μm 的聚苯乙烯 / 磁性微球,通过两种荧光染料不同比例染色,形成多达 100 种独特荧光谱的微球亚群,每种微球包被特异性捕获抗体。
(2)夹心免疫反应:混合编码微球与样本孵育,目标分子与对应微球捕获抗体结合;加入生物素化检测抗体,形成 “微球 - 捕获抗体 - 目标分子 - 检测抗体” 夹心复合物;再加入链霉亲和素 - 藻红蛋白(PE),标记复合物。
(3)双信号检测:仪器双激光读取信号 —— 一束识别微球荧光编码(确定指标种类),另一束检测 PE 荧光强度(定量目标分子浓度)。
核心优势:
- 超高通量:单管同步检测2-100 种指标,50μL 样本即可完成,大幅提升检测效率。
- 高灵敏度:检测下限低至0.01pg/mL,可精准捕获低丰度细胞因子。
- 宽线性范围:动态范围达3.5-6 个数量级,减少样本稀释步骤,降低误差。
- 灵活性强:微球可自由组合,按需定制检测 panel,适配不同研究需求。
(二)MSD 电化学发光多因子检测
技术原理:
(1)电极板与抗体包被:96/384 孔石墨电极板,每孔底部含多个独立碳电极点,各点包被不同捕获抗体。
(2)夹心反应与标记:加入样本与 SULFO-TAG™(钌联吡啶衍生物)标记的检测抗体,孵育形成夹心复合物。
(3)电化学发光与检测:电极板通电后,三丙胺(TPA)氧化引发 SULFO-TAG™发光(620nm 光子),CCD 相机捕获信号,强度与目标分子浓度正相关。

- 超敏检测:灵敏度达fg/mL 级别(0.05-1pg/mL),线性范围5-6 个数量级,适配极低丰度标志物检测。
- 低基质效应:电信号激发与光信号检测解耦,背景干扰极低,适配血清、细胞上清等复杂样本。
- 样本用量少:单孔上样量≤25μL,单孔可检测10 种指标,珍稀样本友好。
- 重复性优异:板内 CV<6-8%,板间 < 10%,批间 < 15%,数据稳定性强。
(三)流式 CBA 多因子检测
技术原理:
(1)荧光微球捕获:不同荧光强度的微球包被特异性捕获抗体,形成 “捕获微球”,与样本中目标因子结合。
(2)夹心复合物形成:加入 PE 标记的检测抗体,形成 “捕获抗体 - 目标因子 - PE 检测抗体” 三明治复合物。
(3)流式信号分析:流式细胞仪检测微球荧光(区分指标)与 PE 荧光强度(定量浓度),软件分析数据。
核心优势:
- 设备兼容度高:无需专用仪器,常规流式细胞仪(如 BD Canto)即可检测,降低实验门槛。
- 快速高效:检测周期3-4 小时,远快于 ELISA(12-24 小时),适配快速实验需求。
- 高性价比:单管 25-50μL 样本可检测5-30 种指标,试剂成本低,适合大规模筛选。
- 灵敏度达标:常规灵敏度达pg/mL 级别,高敏试剂盒可达 0.274pg/mL,满足多数科研需求。
技术对比总结:
| 技术 | 灵敏度 | 样本量 | 核心适用场景 |
|---|---|---|---|
| Luminex | 高(0.01pg/mL) | 10-20μL | 高通量筛选、多指标联合分析 |
| MSD | 超高(fg/mL) | ≤25μL | 低丰度因子、复杂基质样本 |
| 流式 CBA | 中高(0.274pg/mL) | 25-50μL | 常规流式平台、快速检测 |
二、细胞上清样本处理标准流程与注意事项
(一)细胞上清样本处理流程
(1)收集上清
(2)首次离心(去除细胞及大颗粒)
- 条件:4℃、300g、离心 10 分钟
- 目的:沉淀完整细胞、细胞碎片及大颗粒杂质,获取初步澄清上清。
(3)二次离心(彻底去除残留沉淀)
- 条件:4℃、3000g、离心 10 分钟(或 4℃、10000g、离心 15 分钟)
- 目的:去除微小细胞碎片、蛋白聚集体等残留杂质,避免后续检测中非特异性结合。
(4)分装保存
- 分装:取离心后澄清上清,分装至无菌 EP 管,每管 100-300μL(单次检测用量,避免反复冻融)。
- 保存:-80℃超低温冻存,严禁 - 20℃长期保存(易导致蛋白降解);样本反复冻融≤2 次,否则目标蛋白活性下降,检测结果偏低。
(二)细胞上清样本处理注意事项
(1)无血清培养样本蛋白稳定化:无血清培养基中蛋白易吸附于管壁或降解,需添加5-10% 胎牛血清(FBS)或 0.5-1% 牛血清白蛋白(BSA),封闭非特异性吸附位点,稳定目标蛋白。
(2)残留沉淀二次去除:转移上清时若观察到微量沉淀,需再次4℃、3000g 离心 10 分钟,确保上清无杂质,避免堵塞检测仪器或干扰反应。
(3)样本稀释规范:细胞上清通常无需稀释可直接检测;若需稀释使检测值落在标准曲线范围内,稀释液必须含与标准品相同浓度的血清或 BSA,避免基质差异导致结果偏差。
(4)实验复孔设置:细胞培养时建议设置3-6 个复孔,消除边缘效应、培养环境差异带来的误差,保证数据可靠性。
(5)培养基选择:血清中含大量外源性细胞因子,干扰检测结果,优先采用无血清或低血清(≤2%)培养基培养细胞。
(6)培养时间优化:不同细胞分泌细胞因子的峰值时间不同(如免疫细胞 24-48 小时,肿瘤细胞 48-72 小时),需预实验确定最佳培养时间,避免因子浓度过低或降解。
三、细胞上清多因子检测服务哪个公司提供?
| 乐备实官网货号 | Panel | 技术平台 | 检测指标 |
| LXMH10-1 | 人炎症10因子Panel | MSD | IFN-γ,IL-1β,IL-2,IL-4,IL-6,IL-8,IL-10,IL-12p70,IL-13,TNF-α |
| LXLBH10-1 | 人炎症10因子Panel | Luminex | IL-1 β/IL-1F2,IL-2,IL-4,IL-6 ,IL-8/CXCL8,IL-10,IL-12 p70,IL-13,TNF-α,IFN-γ |
| LXMM10-1 | 小鼠炎症10因子Panel | MSD | IFN-γ,IL-1β,IL-2,IL-4,IL-5,IL-6,IL-10,IL-12p70,KC/GRO,TNF-α |
| LXLBM10-1 | 小鼠炎症10因子Panel | Luminex | IL-1 β/IL-1F2,IL-2,IL-4,IL-5,IL-6 ,IL-10,IL-12p70,CXCL1/GRO/α/KC/CINC-1,IFN-γ,TNF-α |
| LXLBR10-1 | 大鼠炎症10因子Panel | Luminex | IL-1 β/IL-1F2,IL-2,IL-4,IL-5,IL-6 ,IL-10,IL-12p70,CXCL1/GRO/α/KC/CINC-1,IFN-γ,TNF-α |
| LXLBM23-1 | 小鼠细胞因子-23因子Panel | Luminex | Eotaxin/CCL11,G-CSF,GM-CSF,IFN-γ,IL-10,IL-12(p40),IL-12(p70),IL-13,IL-17A,IL-1α,IL-1β,IL-2,IL-3,IL-4,IL-5,IL-6,IL-9,GRO-α (Gro-a/KC/CXCL1),MCP-1/CCL2,MIP-1α/CCL3,MIP-1β,RANTES,TNF-α |
| LXLBR23-1 | 大鼠细胞因子-23因子Panel | Luminex | G-CSF,GM-CSF,GRO/KC,IFN-γ,IL-1α,IL-1β,IL-2,IL-4,IL-5,IL-6,IL-7,IL-10,IL-12 (p70),IL-13,IL-17A,IL-18,M-CSF,MCP-1,MIP-1α,MIP-3α,RANTES,TNF-α,VEGF |





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