一、肿瘤新抗原疫苗的治疗前景
疫苗在传统上主要应用于传染病的预防。然而,其能够诱导并扩增抗原特异性免疫应答的特性,长期以来被视为一种具有潜在价值的癌症治疗工具。早期的治疗性疫苗策略主要聚焦于肿瘤中异常或过度表达的自身抗原,即肿瘤相关抗原(TAA)。但这类策略在临床上基本未能取得成功,其原因在于TAA特异性T细胞常受中枢及外周免疫耐受机制的制约。此外,TAA在部分正常组织中也存在一定程度的表达,这增加了疫苗引发自身免疫毒性的风险。
肿瘤细胞在发生过程中积累的体细胞突变,能够产生全新的抗原表征,即新表位或新抗原。基于新抗原而非传统TAA的疫苗策略具有多重显著优势。首先,新抗原仅由肿瘤细胞特异性表达,因此能够引发真正意义上的肿瘤特异性T细胞免疫应答,从而有效避免对正常组织的“脱靶”损伤。其次,新抗原源自于体细胞突变所产生的新生表位,更有可能突破T细胞对自身表位的中心免疫耐受,进而成功激发针对肿瘤的免疫攻击。此外,此类疫苗所增强的新抗原特异性T细胞应答有望在体内持久存在,并形成免疫记忆,这为长期预防疾病复发提供了可能。
二、新抗原的鉴定方法与技术路径
为准确识别肿瘤特异性体细胞突变,需从患者体内获取肿瘤组织样本,同时采集外周血单个核细胞等非肿瘤组织作为对照。通过对肿瘤DNA与种系DNA进行全外显子组测序,可系统性地筛选体细胞突变。此外,RNA测序能够提供突变基因的表达水平信息,有助于进一步验证突变的存在及其生物学相关性。通常,不同肿瘤类型中可检测到数量可观的体细胞突变,但受人类白细胞抗原(HLA)分子递呈能力的限制,仅部分突变能产生可被免疫系统识别的新表位。目前已知HLA-A、HLA-B、HLA-C等位基因超过16000种,因此在预测免疫原性新表位时,必须结合患者个体的HLA分型进行综合分析。
在计算方法学层面,主要通过预测候选肽段与主要组织相容性复合体Ⅰ类(MHC-I)分子的结合能力,来筛选潜在的新表位。一般认为,与特定HLA等位基因结合亲和力较高(如半抑制浓度IC50<150 nmol/L)的肽段更可能有效诱导CD8⁺ T细胞免疫应答。目前已有多种计算算法可用于MHC-I递呈表位的预测,并可通过质谱实验数据进一步优化预测模型。然而,现有方法主要集中于MHC-I结合表位预测;由于MHC-II类分子结合基序具有更高的灵活性,其表位预测的复杂度显著增加,相关计算方法仍处于持续发展阶段。
除计算预测途径外,亦可采用基于肿瘤裂解物的实验策略诱导新抗原特异性免疫应答。该策略通常从患者体内分离自体抗原递呈细胞,主要是树突状细胞(DCs),在体外将其暴露于自体肿瘤裂解物中,再回输至患者体内,旨在激发针对肿瘤相关抗原或新抗原的免疫反应。此方法避免了繁琐的患者特异性新抗原测序与计算分析过程,但存在一定局限性:一方面,肿瘤相关抗原本身的免疫原性普遍较弱;另一方面,裂解物中大量非免疫原性自身抗原的存在,可能干扰甚至抑制针对关键新表位的有效免疫应答,从而影响整体疗效。
三、新抗原免疫原性的决定因素
新抗原疫苗平台的成功,在很大程度上依赖于肿瘤突变负荷。通常认为,高突变负荷的肿瘤可能产生更多可供疫苗靶向的新抗原,并对免疫检查点抑制剂表现出更好的治疗反应。
然而,临床观察表明,高突变负荷与免疫治疗的有效性之间并非始终一致。除肿瘤内在的耐药机制外,这种差异可能与新抗原的“质量”直接相关,即新抗原最终激发辅助性T细胞1和细胞毒性T淋巴细胞免疫应答的能力。
决定新抗原质量的关键因素包括以下五个方面:
1、外源度: 指新抗原相较于野生型蛋白的异质程度。新抗原的内源性越强,其免疫原性通常越弱,且越易被免疫耐受机制所清除。
2、克隆分布: 由克隆性突变产生的新抗原在大多数肿瘤细胞中表达,而仅存在于部分细胞的亚克隆突变则可能在免疫治疗的选择压力下丢失,导致免疫逃逸。
3、突变功能状态: 与乘客突变相比,驱动突变所产生的新抗原更不易因免疫编辑而丢失,因而可能提供更持久的免疫靶点。
4、MHC分子递呈效能: 取决于新抗原与主要组织相容性复合体的结合亲和力,以及MHC分子在肿瘤细胞表面的表达水平。
5、TCR识别亲和力: T细胞受体对MHC1-新抗原复合物的识别强度,直接影响T细胞活化的阈值与效应功能。
这些因素共同影响新抗原能否有效引发抗肿瘤免疫应答,是优化新抗原筛选与疫苗设计的重要考量。
四、个性化新抗原疫苗治疗方案的设计要素
在设计治疗性新抗原疫苗接种方案时,需综合考量多方面关键因素。
首先,在完成患者样本采集后,制备个性化疫苗所需的时间周期至关重要,尤其是在进展期或转移性肿瘤的治疗情境下。时间长短主要取决于所选疫苗平台的技术路径。为优化整体治疗策略,可在疫苗设计与生产阶段,同步对患者实施联合治疗,以期塑造有利于免疫激活的肿瘤微环境。此外,在疫苗接种同时或后续阶段给予适宜的佐剂或免疫调节治疗,亦有助于进一步增强抗原特异性免疫应答。
其次,治疗方案中需明确疫苗本身及其联合疗法的给药途径与频率,包括加强免疫的剂次与间隔。这些参数直接影响免疫反应的强度、持久性与安全性。
最后,为应对疾病进展或复发,可通过对肿瘤组织进行重复基因组测序,监测新抗原谱的动态变化。同时,通过采集外周血及肿瘤样本评估疫苗诱导的T细胞应答水平,能够为后续治疗方案的调整提供重要依据。这种基于实时监测的适应性策略,有助于实现个体化精准免疫治疗的持续优化。

五、新抗原疫苗研发面临的主要挑战
尽管早期临床试验数据显示部分新抗原疫苗具有显著的免疫原性,并能诱导针对肿瘤细胞的杀伤效应,但仍有相当比例的疫苗新表位未能成功激发T细胞应答。当前该领域面临的核心科学挑战在于,如何系统提升疫苗诱导T细胞反应——特别是CD8⁺ T细胞的最大化激活与扩增的能力。
为克服上述障碍,可能需要联合使用能够增强抗原呈递细胞功能、并促进淋巴结内T细胞最佳启动的辅助疗法。潜在的策略包括联合免疫检查点抑制剂、共刺激受体激动剂、Toll样受体激动剂,以及可支持树突状细胞发育与功能的细胞因子等。
另一项关键挑战在于疫苗递送系统的优化与选择。理想的平台需兼顾快速、经济且高效的生产工艺,以确保疫苗能及时应用于临床。目前多种疫苗形式并存,各有优劣,但尚缺乏不同技术路径在患者中直接比较的严谨数据。
此外,联合治疗方案的时间安排亦需审慎考量。虽然将免疫检查点抑制剂与治疗性疫苗联合使用可能产生协同作用,但两种干预措施的最佳给药顺序与时机仍需通过深入研究予以明确。
综上所述,新抗原疫苗代表了个体化癌症免疫治疗的重要方向,虽在理论与技术上已取得显著突破,但其临床转化仍依赖跨学科合作与技术创新,最终目标是实现安全、高效且可及的新型肿瘤免疫治疗方案。
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| 货号 | Panel名称 | 种属 | 检测指标 |
| LXLTH14-3 | 人免疫肿瘤学检查点14因子Panel | Human | TIM-3,CD152/CTLA4,BTLA,CD28,IDO/IDO1,LAG-3,PD-1,PD-L2,CD27,CD137 (4-1BB),GITR,HVEM,CD80,PD-L1 |
| LXRPH005 | 人自噬作用 PCR Array Panel | Human | AKT1, AMBRA1, APP, ATG10, ATG12, ATG16L1, ATG16L2, ATG3, ATG4A, ATG4B, ATG4C, ATG4D, ATG5, ATG7, ATG9A, ATG9B, BAD, BAK1, BAX, BCL2, BCL2L1, BECN1, BID, BNIP3, CASP3, CASP8, CDKN1B, CDKN2A, CLN3, CTSB, CTSD, CTSS, CXCR4, DAPK1, DRAM1, DRAM2, EIF2AK3, EIF4G1, ESR1, FADD, FAS, GAA, GABARAP, GABARAPL1, GABARAPL2, HDAC1, HDAC6, HGS, HSP90AA1, HSPA8, HTT, IFNG, IGF1, INS, IRGM, LAMP1, MAP1LC3A, MAP1LC3B, MAPK14, MAPK8, MTOR, NFKB1, NPC1, PIK3C3, PIK3CG, PIK3R4, PRKAA1, PTEN, RAB24, RB1, RGS19, RPS6KB1, SNCA, SQSTM1, TGFB1, TGM2, TMEM74, TNF, TNFSF10, TP53, ULK1, ULK2, UVRAG, WIPI1 |
| LX-OME-SV1-001 | 1600种自免和肿瘤抗原-单色 | A1BG, AAK1, AARS, ABCF1, ABCF3, ABI1, ABL2, ABT1, ACAT2, ACPP, ACRBP, ACSL6, ACTA1, ACTB, ACTL7B, ACTL8, ACTR2, ACVR1, ACVR1C, ACVR2A, ADAM2, ADAM29, ADCK1, ADD1, ADSL, AFF4, AFP, AGR2, AHSG, AICDA, AIF1, AIFM2, AIFM3, AIM2, AK1, AK2, AK3, AK4, AK7, AK9, AKAP3, AKAP4, AKT1, AKT3, ALDOA, ALOX15, ALOX15B, ALPK1, ALX1, AMD1, AMOTL2, AMT, ANKRD13A, ANKRD45, ANXA1, ANXA11, ANXA2, AP2M1, APCS, APEX1, API5, APOBEC3G, APP, APPL1, AR, ARAF, AREG, ARHGDIA, ARHGDIB, ARHGDIG, ARIH2, ARL1, ARMC3, ARNT, ARRB1, ARX, ASB1, ASCL1, ASNA1, ASPSCR1, ATF1, ATF2, ATF3, ATF4, ATF5, ATG12, ATG7, ATIC, ATP5B, ATXN3, AURKA, AURKB, AXIN1 |





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